Prêt à améliorer la santé intestinale de votre chien ?

Dans ce blog, nous souhaitons approfondir la science derrière les pré-, pro- et postbiotiques, ainsi que d’autres ingrédients actifs importants et leur rôle dans la promotion d’un microbiote intestinal sain chez les chiens. Le microbiote intestinal comprend tous les micro-organismes présents dans les intestins, tels que les bactéries, les virus, les moisissures et leur matériel génétique, connu sous le nom de microbiote ou flore intestinale. Il est essentiel pour diverses fonctions corporelles, notamment la digestion et la réponse immunitaire, et peut être influencé par les pré-, pro- et postbiotiques, de manière similaire à l’humain.

En tant qu’entreprise de marque privée, nous nous efforçons de fournir à nos lecteurs des connaissances et des informations précieuses sur les ingrédients fonctionnels. Nos suppléments sur mesure sont adaptés aux chiens de tous âges et de toutes races dans le but de contribuer à une bonne santé globale.

Les produits Nutriliq: Types de suppléments

Les suppléments destinés à la digestion sont composés de prébiotiques et de probiotiques spécifiques avec l’ajout d’ingrédients actifs. Non seulement le contenu du supplément est important, mais aussi la forme d’administration. En effet, si vous souhaitez que votre quadrupède absorbe correctement et complètement un complément alimentaire dans son métabolisme, il peut être important de tester la forme qu’il ou elle préfère.

Nutriliq peut offrir un mélange symbiotique sous différentes formes :

  • en poudre (à mélanger avec la nourriture habituelle)
  • sous forme de friandise à mâcher (gomme à mâcher)
  • sous forme de pâte comestible


Ces formes peuvent être fournies dans des pots de différentes tailles/capacités. Généralement, les pots de 200 à 250 g sont les plus demandés.

Prebiotiques: Nourriture pour les bactéries bénéfiques

Les prébiotiques sont des glucides à chaîne courte classés comme fibres en raison de leur origine végétale et du fait qu’ils ne sont pas digérés par les enzymes des mammifères. Ils sont sélectivement fermentés par certains microbiotes intestinaux. La consommation de prébiotiques peut moduler considérablement le microbiote intestinal en nourrissant et en augmentant le nombre de certaines bactéries bénéfiques, ce qui modifie la composition du microbiote (53, 40).

Chez Nutriliq, nous utilisons un mélange de FOS, d’inuline, de MOS et de GOS, qui favorisent la production d’acides gras à chaîne courte (AGCC), tels que le butyrate, le propionate et l’acétate (47, 26). Ces AGCC ont chacun leurs propres avantages pour la santé des chiens (40).

FOS & inuline

Les fructo-oligosaccharides (FOS) et l’inuline sont tous deux des formes de fructanes, constituées de courtes chaînes de molécules de fructose, souvent avec une molécule de glucose à l’extrémité (46). En raison des liaisons β-2,1 entre les molécules de fructose, les FOS/l’inuline ne sont pas facilement digérés dans la partie supérieure du tractus gastro-intestinal, ce qui leur permet d’atteindre le côlon où elles sont décomposées par des enzymes produites par certaines bactéries (60).

Les FOS sont métabolisés sélectivement par des bactéries bénéfiques (62) et servent de source d’énergie à des espèces bactériennes spécifiques, telles que Bifidobacterium, Lactobacillus et Bacteroides, contribuant ainsi à une flore intestinale saine (81). Des recherches ont montré que les FOS peuvent modifier efficacement le microbiote intestinal, avec une augmentation des bactéries bénéfiques et une diminution des bactéries potentiellement nocives, telles que Clostridium perfringens (82, 87). De plus, des études ont démontré scientifiquement que la supplémentation en FOS peut améliorer la santé immunitaire des chiots en influençant la production d’immunoglobulines chez les mères allaitantes (1).

Nutriliq utilise de la racine de chicorée séchée, une source riche en inuline. Des recherches menées par Kozłowska et al. (2015) (47) ont montré que la supplémentation en inuline dans l’alimentation des chiens a un effet bénéfique sur le microbiote intestinal. Cela se traduit par une augmentation des bactéries bénéfiques telles que les Bifidobacterium. De plus, l’inuline favorise l’intégrité intestinale et a des effets positifs sur le métabolisme de l’azote chez les chiens, ce qui peut entraîner une réduction de l’odeur désagréable des selles (36, 7).

MOS

Les parois cellulaires de la levure, connues sous le nom de mannan-oligosaccharides (MOS), sont des glucides non digestibles qui modulent le système immunitaire et influencent les populations microbiennes dans l’intestin. Le MOS agit comme un prébiotique en empêchant les bactéries nuisibles de s’attacher à la paroi intestinale et de s’y établir. Cette propriété du MOS contribue à maintenir un environnement intestinal stable (83).

Les mannanes, éléments essentiels des MOS, augmentent les niveaux d’immunoglobuline A dans le sang des chiens. Chez les chiens adultes, les MOS favorisent la santé intestinale en augmentant le nombre de lactobacilles et en réduisant le nombre de bactéries nocives dans les selles (83).

Dans les suppléments potentiels que Nutriliq peut composer, les parois cellulaires de la levure de bière réelle (100% Saccharomyces cerevisiae) sont utilisées, contenant un haut niveau de β-glucanes et de mannan-oligosaccharides. Cela a un impact positif sur le microbiome, le système immunitaire et sur les propriétés de liaison des pathogènes et des mycotoxines (70). Ces parois cellulaires présentent une activité prébiotique significative et stimulent la croissance des bonnes bactéries intestinales, comme en témoigne l’augmentation du butyrate, du lactate, de l’acétate et du propionate. Le propionate est une source d’énergie essentielle pour l’épithélium intestinal (26), contribuant ainsi de manière significative à la santé et à la protection de l’intestin contre les processus inflammatoires (55, 83).

GOS

Les galacto-oligosaccharides (GOS) sont des fibres solubles non digestibles produites à partir de lactose (24). Les variantes de GOS les plus courantes, telles que les galactosyllactoses, se trouvent dans le colostrum et le lait de différentes sources (58).

Les GOS ont un effet direct sur la paroi intestinale en interagissant avec les cellules épithéliales, ce qui conduit à une intégrité intestinale accrue et aide à résister aux maladies inflammatoires intestinales. Des études montrent que les GOS favorisent la croissance de bactéries bénéfiques telles que les Bifidobactéries (17) et les Lactobacilles (42). Ces bactéries produisent des acides gras à chaîne courte (15, 50) qui servent de source d’énergie (9), inhibent les pathogènes potentiels par leur action antimicrobienne (86), améliorent la défense immunitaire (69), favorisent la morphologie de la muqueuse intestinale (19) et stimulent l’absorption des minéraux dans le côlon. Ainsi, les GOS favorisent la fermentation des glucides et ont des effets bénéfiques sur la santé intestinale en améliorant la composition de la microbiote intestinale (24).

Probiotiques: Le potentiel bénéfique des micro-organismes

Les probiotiques sont des colonies vivantes de micro-organismes qui, lorsqu’ils sont intégrés à l’alimentation, favorisent l’hôte en régulant la composition de la microbiote intestinale en faveur des micro-organismes non pathogènes (34, 16).

Ces colonies sont des souches sélectionnées des mêmes espèces bactériennes bénéfiques qui sont spécifiquement soutenues par des prébiotiques. Alors que les prébiotiques agissent comme sources de nutriments pour des micro-organismes spécifiques, et ainsi influent sur l’équilibre de la microbiote intestinale, les probiotiques ont démontré leur efficacité à modifier l’environnement microbien du côlon en tant que source directe de micro-organismes bénéfiques. Ceci est dû à leur capacité à survivre à travers l’estomac et l’intestin grêle du chien (37, 54, 6).

Les probiotiques peuvent inhiber le développement de bactéries pathogènes en compétition pour les nutriments et les sites de liaison dans l’épithélium intestinal, en stimulant le système immunitaire de l’hôte, en produisant des substances antimicrobiennes et en acidifiant les intestins par la production d’acides, notamment de l’acide lactique. De plus, les probiotiques synthétisent des vitamines, des enzymes et des acides gras à chaîne courte, dont l’hôte bénéficie (39, 84, 76).

Nutriliq travaille avec trois types de probiotiques: Bacillus subtilis, Lactobacillus acidophillus et Enterococcus faecium. Chacun a une action légèrement différente.

Bacillus subtilis C-3102

Nous utilisons une souche sélectionnée de Bacillus subtilis C-3102, qui stimule une microflore intestinale équilibrée et robuste. Cette souche offre une protection solide contre les agents pathogènes et favorise une digestion optimale (79). Les bactéries Bacillus sont bénéfiques car elles forment des spores, ce qui les rend plus résistantes au stress environnemental et aux pH acides dans le tractus gastro-intestinal (16). La souche C-3102 peut survivre à différentes températures (jusqu’à 105°C), même dans des conditions de production variées (79).

Deux études montrent que l’utilisation de B. subtilis améliore la qualité des selles chez les chiens, notamment en réduisant la diarrhée chronique (65) et en améliorant la texture, l’odeur et la composition des selles. De plus, cela réduit le taux d’ammoniac, ce qui indique une diminution des processus de pourriture intestinale (34).

Lactobacillus acidophilus CECT 4529

Nous utilisons également Lactobacillus acidophilus CECT 4529, une bactérie en forme de bâtonnet anaérobie et non sporulée qui produit de l’acide lactique. Cela améliore la consistance des selles et contribue à une flore intestinale saine. De plus, L. acidophilus a un impact positif sur la réponse immunitaire locale et protège la paroi intestinale contre les bactéries nuisibles (33).

Des études indiquent que la supplémentation en L. acidophilus entraîne une augmentation du nombre de lactobacilles dans les selles, ce qui peut aider à protéger les chiens contre les infections causées par des Clostridia, tels que C. difficile et C. perfringens. De plus, cela aide à inhiber la croissance de bactéries nuisibles telles que les Enterobactéries, Clostridium perfringens, Escherichia coli et Enterococcus spp., contribuant ainsi à un meilleur équilibre de la flore intestinale (54, 6).

Enterococcus faecium NCIMB 10415

Enterococcus faecium est une bactérie gram-positive qui se trouve naturellement dans le tractus gastro-intestinal des humains et des animaux (93, 3), et fait partie du groupe des bactéries lactiques. Ce groupe comprend plusieurs espèces bactériennes généralement bénéfiques et est nommé d’après l’acide lactique qu’elles produisent en tant que sous-produit métabolique de la fermentation (49). E. faecium est connu pour son action probiotique et est utilisé dans le monde entier en raison de sa capacité à survivre et à prospérer dans les intestins (93, 3). Selon Nybroe et al. (2023) (61), la bactérie peut survivre dans le microbiote intestinal jusqu’à 19 jours après l’arrêt de la supplémentation.

Une étude menée par Benyacoub et al. (2003) (8) montre que E. faecium peut améliorer la fonction immunitaire des chiens sans effet néfaste sur l’apport alimentaire, le poids ou les paramètres sanguins. Il augmente la production d’anticorps IgA et IgG, en particulier après la vaccination contre la maladie de Carré. Un avantage supplémentaire d’E. faecium est qu’il peut réduire la diarrhée liée au stress chez les chiens (73, 20).

Nutriliq utilise un additif alimentaire microbien composé de cellules déshydratées de E. faecium. Quatre études ont confirmé les effets positifs de cet additif sur la qualité fécale et les paramètres immunitaires tels que les concentrations d’IgA chez les chiens (31).

Postbiotiques: Avantages pour la santé des micro-organismes inactifs

Pour les postbiotiques, il existe deux définitions différentes en circulation.

Une première définition, telle que convenu par l’International Scientific Association of Probiotics and Prebiotics (ISAPP) et comme décrit dans son rapport par Salminen et al. (2021) (75), stipule que les postbiotiques sont un préparat de micro-organismes morts et/ou de leurs composants qui ont des effets bénéfiques sur la santé de l’hôte. Alors qu’une autre définition, plus répandue pour les postbiotiques, stipule que ce sont des produits bactériens non viables ou des sous-produits métaboliques de la microbiote (43, 68, 85).

Les postbiotiques sont issus de processus de fermentation méticuleux de matières premières, au cours desquels des métabolites bénéfiques sont produits par des bactéries et des levures pour soutenir la santé. Ils ont des effets secondaires minimes car ils ne contiennent pas de micro-organismes vivants. La supplémentation en postbiotiques peut aider en cas de digestion perturbée ou de déséquilibre de la flore intestinale, comme après un changement de régime alimentaire ou à la suite d’un traitement médicamenteux, afin de rétablir l’équilibre dans les intestins (43, 68, 85, 75).

Nutriliq utilise une forme spécifique de postbiotiques appelée Diamond V®. Celle-ci est issue d’un processus de fermentation avec Saccharomyces cerevisiae. Au cours de ce processus, des substances telles que des acides organiques, des enzymes, des acides gras à chaîne courte (SCFA) et des vitamines sont générées par de bonnes bactéries intestinales et des levures. Ces substances forment des métabolites utiles qui soutiennent la santé intestinale (43, 68, 85, 75).

Les résultats d’une étude de Lin et al. (2019) (48) montrent que la supplémentation avec un produit de fermentation de Saccharomyces cerevisiae peut être bénéfique pour les chiens adultes en influençant positivement la microbiote intestinale et en améliorant la capacité immunitaire, ce qui entraîne une réduction de la présence de micro-organismes potentiellement pathogènes. Un avantage supplémentaire est que l’aliment a une grande appétence et est bien toléré par les chiens (27).

Autres ingrédients actifs

Outre les prébiotiques, les probiotiques et les postbiotiques, il existe d’autres substances utiles qui favorisent le bon fonctionnement du système digestif. Nutriliq intègre également ces ingrédients actifs dans ses compléments alimentaires spécifiquement conçus pour soutenir une santé intestinale optimale.

Le zinc est un oligo-élément essentiel pour diverses fonctions corporelles chez les chiens (67). Il est absorbé par l’intestin, mais peut également être perdu par les selles, l’urine, le suc pancréatique, les cheveux, la peau et les ongles (11). Nutriliq utilise du glycinate de zinc, une forme chélatée de zinc organique liée à l’acide aminé glycine. Cette forme est plus biodisponible et mieux absorbée par l’organisme (51, 52).

Le clinoptilolite est utilisé en raison de ses différents effets bénéfiques, tels que l’amélioration de la flore intestinale, le renforcement de l’immunité, la détoxification du corps des toxines par adsorption (par exemple, les métaux lourds tels que le mercure) (4) et la prévention de la diarrhée (4, 14). Il s’agit d’une forme naturelle de zéolithe, un minéral argileux à grains fins et microporeux (14). Il peut améliorer la qualité des selles, résultant en une meilleure forme, moins de volume et plus de consistance (66).

Spirulina platensis, une microalgue bleu-vert (45), renforce la réponse immunitaire et stabilise la microbiote intestinale en stimulant les bactéries bénéfiques et en supprimant les bactéries nuisibles (78, 57, 45, 21). De plus, elle agit comme un détoxifiant naturel en aidant le corps à éliminer les toxines nocives, ce qui bénéficie à la santé globale et au métabolisme (57, 74).

Ascophyllum nodosum est une algue brune de la famille des Fucaceae et est utilisée dans les compléments alimentaires en raison de sa valeur nutritive précieuse, comprenant des protéines, des minéraux, des vitamines A, K et C, des polyphénols et des polysaccharides. De plus, elle est riche en fibres (23). Les polysaccharides peuvent induire des changements bénéfiques dans la flore intestinale (23) et réguler les enzymes digestives, ce qui peut être intéressant pour le traitement de l’obésité (23, 22). Les polysaccharides tels que les alginates aident le corps à éliminer les métaux lourds, tandis que le fucoidane, l’ascophyllane et la fucoxanthine stimulent la réponse immunitaire, réduisent l’inflammation et contrarient le développement des tissus adipeux (92, 38).

Les pectines sont des fibres alimentaires solubles qui peuvent être facilement décomposées par la microbiote intestinale. Cela entraîne la production d’acides gras à chaîne courte qui favorisent un environnement intestinal sain (10, 88, 41, 63). De plus, les pectines jouent un rôle dans le renforcement de l’immunité intestinale en favorisant l’adhérence des bactéries intestinales bénéfiques et en inhibant l’adhérence des bactéries nuisibles (91, 64).

L-Glutamine est un acide aminé alpha qui joue un rôle crucial dans la synthèse des protéines dans le corps, essentiel pour la croissance, la récupération et l’entretien des cellules (25, 18). En période de stress intense, la production naturelle de L-glutamine peut diminuer, nécessitant ainsi un supplément. De plus, la glutamine fournit de l’énergie aux cellules intestinales, aide à la réparation des tissus intestinaux endommagés, renforce la barrière intestinale, stimule une réponse immunitaire efficace et contribue à réduire les inflammations telles que l’entérite (25, 59, 72).

La poudre de cosse de psyllium (Plantago psyllium) est ajoutée aux suppléments en raison de ses fibres alimentaires hautement solubles, qui fermentent lentement dans le gros intestin et ont des propriétés gélifiantes. Elle normalise le passage des aliments et favorise la rétention d’eau dans la masse fécale, ce qui stimule la formation des selles et rend la constipation chronique contrôlable (88). Ainsi, une étude d’Alves et al., 2021 a montré un soulagement de la diarrhée chronique, une diminution de la fréquence des selles et une amélioration de la consistance des selles. Ces effets positifs étaient encore visibles deux mois après l’arrêt de la supplémentation en psyllium. De plus, tous les individus étudiés présentaient des signes de prise de poids, suggérant que le psyllium peut aider les animaux de compagnie ayant des difficultés à prendre du poids (2).

L’acaciagom est une sécrétion soluble des acacias et une source nutritive de fibres alimentaires solubles, principalement composée de polysaccharides complexes (71). Des recherches montrent que l’acaciagom agit comme un prébiotique dans l’intestin, favorisant la croissance et l’activité métabolique de bactéries bénéfiques telles que Bifidobacterium et Lactobacillus. Ces bactéries fermentent les composés prébiotiques tels que les fructo-oligosaccharides (FOS), produisant des métabolites bénéfiques tels que les acides gras à chaîne courte. Cela entraîne une amélioration de la santé intestinale en abaissant le pH et en augmentant l’apport énergétique des cellules intestinales (32).

Quercétine, un flavonoïde aux propriétés antioxydantes, offre une protection contre les dommages cellulaires et les dommages à l’ADN (12). De plus, la quercétine est connue pour son action antihistaminique, ce qui lui permet de réguler les niveaux d’histamine. Cela peut aider à réduire les démangeaisons et les inflammations chez les chiens allergiques (5, 28, 90, 35, 44, 80), ainsi que chez les chiens souffrant de maladies inflammatoires chroniques du tractus digestif (29).

Le colostrum contient des composants immunostimulants tels que des immunoglobulines, qui renforcent la réponse immunitaire à la fois au niveau des muqueuses et du système (13, 30, 56, 78). Cela peut notamment aider à réduire les réactions allergiques qui provoquent des démangeaisons. Les substances bioactives telles que les probiotiques et les facteurs de croissance favorisent la digestion et contribuent au maintien d’une fonction intestinale équilibrée (13, 30, 56, 78).

Liste de références

  1. Adogony, V., Respondek, F., Biourge, V., Rudeaux, F., Delaval, J., Bind, J-L., Salmon, H. (2007). Effects of dietary scFOS on immunoglobulins in colostrums and milk of bitches. J Anim Physiol Anim Nutr, 91: 169–174. https://doi.org/10.1111/j.1439-0396.2007.00688.x
  2. Alves, J.C., Santos, A., Jorge, P., Pitães, A. (2021). The use of soluble fibre for the management of chronic idiopathic large bowel diarrhoea in police working dogs. BMC Veterinary Research, 17 (1): 100. https://doi.org/10.1186/s12917-021-02809-w
  3. Araújo, T.F., Ferreira, C.L.L.F. (2013). The Genus Enterococcus as Probiotic. Brazilian Archives of Biology and Technology, 56 (3): 457–466. https://doi.org/10.1590/S1516-89132013000300014
  4. Ariton, A.M., Neculai-Valeanu, A.S., Sănduleanu, C., Crivei, I.C., Postolache, A.N., Porosnicu, I., Mădescu, B.M., Ungureanu, E., Trincă, L.C. (2022). Applications of Clinoptilolite in Veterinary Medicine and Animal Husbandry. Scientific Papers Journal, 65 (4). https://www.researchgate.net/publication/369109310
  5. Atuahene, D., Costale, A., Martello, E., Mannelli, A., Radice, E., Ribaldone, D.G., Chiofalo, B., Stefanon, B., Meineri, G. (2023). A Supplement with Bromelain, Lentinula edodes, and Quercetin: Antioxidant Capacity and Effects on Morphofunctional and Fecal Parameters (Calprotectin, Cortisol, and Intestinal Fermentation Products) in Kennel Dogs. Veterinary Sciences, 10 (8): 486. https://doi.org/10.3390/vetsci10080486
  6. Baillon, M.L., Marshall-Jones, Z.V., Butterwick, R.F. (2004). Effects of probiotic Lactobacillus acidophilus strain DSM13241 in healthy adult dogs. American Journal of Veterinary Research, 65 (3): 338–343. https://doi.org/10.2460/ajvr.2004.65.338
  7. Barko, P.C., McMichael, M.A., Swanson, K.S., Williams, D.A. (2018). The Gastrointestinal Microbiome: A Review. Journal of Veterinary Internal Medicine, 32 (1): 9-25. https://doi.org/10.1111/jvim.14875
  8. Benyacoub, J., Czarnecki-Maulden, G.L., Cavadini, C., Sauthier, T., Anderson, R.E., Schiffrin, E.J., von der Weid, T. (2003). Supplementation of food with Enterococcus faecium (SF68) stimulates immune functions in young dogs. J Nutr, 133: 1158-1162. https://doi.org/10.1093/jn/133.4.1158
  9. Besten, G. den, Eunen, K. van, Groen, A.K., Venema, K., Reijngoud, D.-J., Bakker, B.M. (2013). The role of short-chain fatty acids in the interplay between diet, gut microbiota, and host energy metabolism. Journal of Lipid Research, 54 (9): 2325–2340. https://doi.org/10.1194/jlr.R036012
  10. Beukema, M., Faas, M. M., de Vos, P. (2020). The effects of different dietary fiber pectin structures on the gastrointestinal immune barrier: impact via gut microbiota and direct effects on immune cells. Experimental & molecular medicine, 52 (9), 1364–1376. https://doi.org/10.1038/s12276-020-0449-2
  11. Beynen, A.C. (2020a). Zinc in dog food. Bonny Canteen, 1, 149-164. https://www.researchgate.net/publication/344458277
  12. Beynen, A.C. (2020b). Quercetin for dogs. Bonny Canteen, 1, 30–37. https://www.researchgate.net/publication/340998452
  1. Beynen A.C. (2020c). Bovine colostrum for dogs. Bonny Canteen, 1, 95-102. https://www.researchgate.net/publication/343253932
  2. Beynen, A.C. (2018). Clays in dog food. Creature Companion, 38, 40https://www.researchgate.net/publication/324137441
  1. Bindels, L.B., Delzenne, N.M., Cani, P.D., Walter, J. (2015). Towards a more comprehensive concept for prebiotics. Nature Reviews Gastroenterology and Hepatology, 12 (5): 303–310. doi:10.1038/nrgastro.2015.47
  2. Biourge, V., Vallet, C., Levesque, A., Sergheraert, R., Chevalier, S., Roberton, J.-L. (1998). The use of probiotics in diets of dogs. Journal of Nutrition, 128: 2730S–2732S. https://doi.org/10.1093/jn/128.12.2730S
  1. Bouhnik, Y., Flourié, B., D’Agay-Abensour, L., Pochart, P., Gramet, G., Durand, M., Rambaud, J.-C. (1997). Administration of transgalacto-oligosaccharides increases fecal Bifidobacteria and modifies colonic fermentation metabolism in healthy humans. The Journal of Nutrition, 127 (3): 444–448. https://doi.org/10.1093/jn/127.3.444
  2. Breslow, R., Cheng, Z.L. (2009). On the origin of terrestrial homochirality for nucleosides and amino acids. PNAS, 106 (23): 9144-6. https://doi.org/10.1073/pnas.0904350106
  3. Burger-van Paassen, N., Vincent, A., Puiman, P.J., van der Sluis, M., Bouma, J., Boehm, G., van Goudoever, J.B., van Seuningen, I., Renes, I.B. (2009). The regulation of intestinal mucin MUC2 expression by short-chain fatty acids: implications for epithelial protection. Biochemical Journal 420 (2): 211–219. https://doi.org/10.1042/BJ20082222
  4. Bybee, S.N., Scorza, A.V., Lappin, M.R. (2011). Effect of the probiotic Enterococcus faecium SF68 on presence of diarrhea in cats and dogs housed in an animal shelter. Journal of Veterinary Internal Medicine, 25: 856-860. https://doi.org/10.1111/j.1939-1676.2011.0738.x
  5. Chamorro, G., Salazar, S., Favila-Castillo, L., Steele, C., Salazar, M. (1997). Reproductive and peri-and postnatal evaluation of Spirulina maxima in mice. Journal of Applied Phycology, 9 (2): 107–112. DOI:1023/A:1007994500084
  6. Chater, P.I., Wilcox, M.D., Houghton, D., Pearson, J.P. (2015). The role of seaweed bioactives in the control of digestion: implications for obesity treatments. Food funct., 6 (11): 3420-7. https://doi.org/10.1039/C5FO00293A
  7. Chen L., Xu, W., Chen, D., Chen, G., Liu, J., Zeng, X., Shao, R., Zhu, H. (2018) Digestibility of sulfated polysaccharide from the brown seaweed Ascophyllum nodosum and its effect on the human gut microbiota in vitro. Int J Biol Macromol., 112: 1055-1061. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2018.01.183
  8. Corbee, R.J. (2024). The effects of galacto-oligosaccharides on faecal parameters in healthy dogs and cats. Research in Veterinary Science, https://doi.org/10.1016/j.rvsc.2023.105116
  9. Cruzat, V., Macedo Rogero, M., Noel Keane, K., Curi, R., Newsholme, P. (2018). Glutamine: Metabolism and Immune Function, Supplementation and Clinical Translation. Nutrients, 10: 1564. https://doi.org/10.3390/nu10111564
  10. Cummings, J.H., Englyst, H.N. (1987). Fermentation in the human large intestine and the available substrates. American Journal of Clinical Nutrition, 45: 1234–1255. https://doi.org/10.1093/ajcn/45.5.1243
  11. Davenport, G.M., Block, S.S., Adolphe, J.L. (2023). Effects of extruded pet foods containing dried yeast (Saccharomyces cerevisiae) on palatability, nutrient digestibility, and fecal quality in dogs and cats. Translational Animal Science, 7 (1): 107. https://doi.org/10.1093/tas/txad107
  12. de Santiago, M.S., Arribas, J.L.G., Llamas, Y.M., Becvarova, I., Meyer, H. (2021). Randomized, double-blind, placebo-controlled clinical trial measuring the effect of a dietetic food on dermatologic scoring and pruritus in dogs with atopic dermatitis. BMC Veterinary Research, 17 (1): 354. https://doi.org/10.1186/s12917-021-03063-w
  13. Dodda, D., Chhajed, R., Mishra, J. (2014). Protective effect of quercetin against acetic acid induced inflammatory bowel disease (IBD) like symptoms in rats: possible morphological and biochemical alterations. Pharmacological reports : PR, 66 (1), 169–173. https://doi.org/10.1016/j.pharep.2013.08.013
  14. DuBourdieu, D. (2019). Colostrum Antibodies, Egg Antibodies and Monoclonal Antibodies Providing Passive Immunity for Animals. Nutraceuticals in Veterinary Medicine, 245–257. https://doi.org/10.1007/978-3-030-04624-8_18
  15. EFSA Panel on Additives and Products or Substances Used in Animal Feed (FEEDAP), (2013). Scientific Opinion on the safety and efficacy of Cylactin® (Enterococcus faecium) as a feed additive for cats and dogs. EFSA Journal, 11 (2): 3098, 15. https://doi.org/10.2903/j.efsa.2013.3098
  1. Elnour, A.A.M., Abdurahman, N.H., Musa, K.H., Rasheed, Z. (2023). Prebiotic potential of gum Arabic for gut health. International Journal of Health Sciences, 17 (6): 4-5. https://www.researchgate.net/publication/375412896
  2. Fang, Y., Polk, D.B. (2011). Probiotics and immune health. Curr Opin Gastroenterol, 27 (6): 496–501. DOI: 10.1097/MOG.0b013e32834baa4d
  3. Félix, A.P., Netto, M.V.T, Murakami, F.Y., de Brito, C.B.M., de Oliveira, S.G., Maiorka, A. (2010). Digestibility and fecal characteristics of dogs fed with Bacillus subtilis in diet. Ciência Rural, Santa Maria, 40 (10): 2169–2173.https://doi.org/10.1590/S0103-84782010005000166
  4. Finn, D. F., Walsh, J. J. (2013). Twenty-first century mast cell stabilizers. British journal of pharmacology, 170 (1), 23–37. https://doi.org/10.1111/bph.12138
  5. Flickinger, E.A., Van Loo, J., Fahey Jr, G.C. (2003a). Nutritional responses to the presence of inulin and oligofructose in the diets of domesticated animals: A review. Rev. Food Sci. Nutri., 43: 19–60. https://doi.org/10.1080/10408690390826446
  6. Floch, M.H., Walker, W.A., Guandalini, S. (2008). Recommendations for Probiotic Use. J Clin Gastroenterol, 42: S104–S108. https://www.researchgate.net/publication/283115625
  7. Gammone, M.A., D’Orazio, N. (2015) Anti-obesity activity of the marine carotenoid fucoxanthin. Marine drugs., 13 (4): 2196-214. https://doi.org/10.3390/md13042196
  8. Ghadban, G.S. (2002). Probiotics in broiler production – a review. Archives Geflugelk, 66 (2): 49–58. https://www.researchgate.net/publication/285666993
  9. Hussein, H.S., Flickinger, E.A., Fahey, G.C. (1999). Petfood Applications of Inulin and Oligofructose. Journal of Nutrition, 129 (7): 1454S-1456S. https://doi.org/10.1093/jn/129.7.1454S
  10. Inngjerdingen, K. T., Langerud, B. K., Rasmussen, H., Olsen, T. K., Austarheim, I., Grønhaug, T. E., Aaberge, I. S., Diallo, D., Paulsen, B. S., Michaelsen, T. E. (2013). Pectic polysaccharides isolated from Malian medicinal plants protect against Streptococcus pneumoniae in a mouse pneumococcal infection model. Scandinavian journal of immunology, 77 (5), 372–388. https://doi.org/10.1111/sji.12047
  11. Ito, M., Deguchi, Y., Miyamori, A., Matsumoto, K., Kikuchi, H., Matsumoto, K., Kobayashi, Y., Yajima, T., Kan, T. (1990). Effects of administration of galactooligosaccharides on the human faecal microflora, stool weight and abdominal sensation. Microbial Ecology in Health and Disease, 3 (6): 285–292. https://doi.org/10.3109/08910609009140251
  12. Ji, J., Jin, W., Liu, S. J., Jiao, Z., Li, X. (2023). Probiotics, prebiotics, and postbiotics in health and disease. MedComm, 4 (6), 420. https://doi.org/10.1002/mco2.420
  13. Kanoh, R., Hatano, T., Ito, H., Yoshida, T., Akagi, M., (2000). Effects of tannins and related polyphenols on superoxide-induced histamine release from rat peritoneal mast cells. Phytomedicine, 7 (4): 297-302. https://doi.org/10.1016/S0944-7113(00)80047-1
  14. Khan, Z., Bhadouria, P., Bisen, P.S. (2005). Nutritional and therapeutic potential of Spirulina. Curr Pharm Biotechnol., 6: 373–9. https://www.researchgate.net/publication/7517455
  15. Kolida, S., Gibson, G.R. (2007). Prebiotic capacity of inulin-type fructans. Nutr., 137: 2503–2506. https://doi.org/10.1093/jn/137.11.2503S
  16. Kozłowska, I., Marć-Pieńkowska, J., Bednarczyk, M. (2015). Beneficial aspects of inulin supplementation as a fructooligosaccharide prebiotic in monogastric animal nutrition – A REVIEW. Anim. Sci., 16: 315–331. DOI:10.1515/aoas-2015-0090
  17. Lin, C.Y., Alexander, C., Steelman, A.J., Warzecha, C.M., de Godoy, M.R.C., Swanson, K.S. (2019). Effects of a Saccharomyces cerevisiae fermentation product on fecal characteristics, nutrient digestibility, fecal fermentative end-products, fecal microbial populations, immune function, and diet palatability in adult dogs. Journal of Animal Science, 97: 1586–1599. https://doi.org/10.1093/jas/skz064
  18. Ljungh, A., Wadström, T. (2006). Lactic acid bacteria as probiotics. Curr Issues Intest Microbiol., 7 (2): 73-89. DOI: 10.5772/50732
  19. Louis, P., Flint, H.J. (2009). Diversity, metabolism and microbial ecology of butyrate producing bacteria from the human large intestine. FEMS Microbiology Letters, 294 (1): 1–8. https://doi.org/10.1111/j.1574-6968.2009.01514.x
  20. Lowe, J.A., Wiseman, J. (1998). A Comparison of the Bioavailability of Three Dietary Zinc Sources Using Four Different Physiologic Parameters in Dogs. Nutr., 128: 2809S–2811S. https://doi.org/10.1093/jn/128.12.2809S
  21. Lowe, J.A., Wiseman, J., Cole, D.J.A. (1994). Absorption and Retention of Zinc when Administered as an Amino-Acid Chelate in the Dog. The Journal of Nutrition, 124 (12): 2572S–2574S. https://doi.org/10.1093/jn/124.suppl_12.2572S
  22. Macfarlane, S., Macfarlane, G.T., Cummings, J.H. (2006). Review article: prebiotics in the gastrointestinal tract. Alimentary Pharmacology & Therapeutics, 24: 701–714. https://doi.org/10.1111/j.1365-2036.2006.03042.x
  23. Marshall-Jones, Z.V., Baillon, M.A., Croft, J.M., Butterwick, R.F. (2006). Effects of Lactobacillus acidophilusDSM13241 as a probiotic in healthy adult cats. Am J Vet Res, 67 (6): 1005-1012. https://doi.org/10.2460/ajvr.67.6.1005
  24. Middelbos, I.S., Fastinger, N.D., Fahey, G.C. Jr. (2007a). Evaluation of fermentable oligosaccharides in diets fed to dogs in comparison to fiber standards. Anim. Sci., 85: 3033–3044. https://doi.org/10.2527/jas.2007-0080
  25. Mila, H., Grellet, A., Mariani, C., Feugier, A., Guard, B., Suchodolski, J., Steiner, J., Chastant-Maillard, S. (2017). Natural and artificial hyperimmune solutions: Impact on health in puppies. Reproduction in domestic animals = Zuchthygiene, 52 (2): 163–169. https://doi.org/10.1111/rda.12824
  26. Mishra, T., Joshi, M., Singh, S., Jain, P., Kaur, R., Ayub, S., Kaur, K. (2013). Spirulina: The Beneficial Algae. International Journal of Applied Microbiology Science, 2 (3): 21-35. https://www.researchgate.net/publication/339617444
  27. Newburg, D.S., Ko, J.S., Leone, S., Nanthakumar, N.N. (2016). Human Milk Oligosaccharides and Synthetic Galactosyloligosaccharides Contain 3′-, 4-, and 6′-Galactosyllactose and Attenuate Inflammation in Human T84, NCM-460, and H4 Cells and Intestinal Tissue Ex Vivo. The Journal of Nutrition, 146 (2): 358–367. https://doi.org/10.3945/jn.115.220749
  28. Nguyen, T.L., Durán, R.V. (2018). Glutamine metabolism in cancer therapy. Cancer Drug Resist, 1: 126-138. http://dx.doi.org/10.20517/cdr.2018.08
  29. Niness, K.R. (1999). Inulin and oligofructose: What are they? Nutr., 129: 1402–1406. https://doi.org/10.1093/jn/129.7.1402S
  30. Nybroe, S., Horsman, P.B., Krag, K., Hosbjerg, T.G., Stenberg, K., Khakimov, B., Baymler, J., Bjørnvad, C.R., Kieler, I.N. (2023). Alterations in Healthy Adult Canine Faecal Microbiome and Selected Metabolites as a Result of Feeding a Commercial Complete Synbiotic Diet with Enterococcus faecium NCIMB 10415. Animals, 13: 144 https://doi.org/10.3390/ani13010144
  31. Okazaki, M., Fujikawa, S., Matsumoto, N. (1990). Effect of Xylooligosaccharide on the Growth of Bifidobacteria. Bifidobacteria Microflora, 9 (2): 77–86. https://doi.org/10.12938/bifidus1982.9.2_77
  32. Olano-Martin, E., Gibson, G. R., Rastell, R. A. (2002). Comparison of the in vitro bifidogenic properties of pectins and pectic-oligosaccharides. Journal of applied microbiology, 93 (3), 505–511. https://doi.org/10.1046/j.1365-2672.2002.01719.x
  33. Olano-Martin, E., Williams, M. R., Gibson, G. R., Rastall, R. A. (2003). Pectins and pectic-oligosaccharides inhibit Escherichia coli O157:H7 Shiga toxin as directed towards the human colonic cell line HT29. FEMS microbiology letters, 218 (1), 101–105. https://doi.org/10.1111/j.1574-6968.2003.tb11504.x
  1. Paap, P., van der Laak, J., Smit, J., Nakamura, N., Beynen, A. (2016). Administration of Bacillus subtilis C-3102 (Calsporin®) may improve feces consistency in dogs with chronic diarrhoea. Research Opinions in Animal and Veterinary Sciences, 6: 256–260. DOI:20490/ROAVS/16-043
  2. Pellegrini, O., Casini, L., Gatta, D. (2009). Zeoliti ed alimentazione animale: effetto della somministrazione di Clinoptilolite sulla salute, digeribilità e produzioni fecali nel cane. Veterinaria, 23 (1): 33-39. https://www.researchgate.net/publication/298949414
  3. Pereira, A.M., Maia, M.R.G., Fonseca, A.J.M., Cabrita, A.R.J. (2021). Zinc in Dog Nutrition, Health and Disease: A Review. Animals, 11: 978.https://doi.org/10.3390/ani11040978
  4. Prajapati, N., Patel, J., Singh, S., Yadav, V. K., Joshi, C., Patani, A., Prajapati, D., Sahoo, D. K., Patel, A. (2023). Postbiotic production: harnessing the power of microbial metabolites for health applications. Frontiers in microbiology, 14, 1306192. https://doi.org/10.3389/fmicb.2023.1306192
  5. Pratt, V.C., Tappenden, K.A., McBurney, M.I., Field, C.J. (1996). Short-Chain Fatty Acid Supplemented Total Parenteral Nutrition Improves Nonspecific Immunity After Intestinal Resection in Rats. Journal of Parenteral and Enteral Nutrition, 20 (4): 264–271. https://doi.org/10.1053/gast.1997.v112.pm9041241
  6. Rakebrandt, M. (2017). Assessment of the prebiotic effect of Biolex® MB40 with utilisation of the SCIMETM in-vitro system.
    Link: 10.-Assessment-of-the-Prebiotic-ettect-of-Bolex-MB40-on-canines.pdf (primeanimalhealth.com.au)
  1. Rawi, M.H., Abdullah, A., Ismail, A., Sarbini, S.R. (2021). Manipulation of Gut Microbiota Using Acacia Gum Polysaccharide. ACS Omega, 6: 17782-17797. https://doi.org/10.1021/acsomega.1c00302
  2. Rodrigues, A.K.S., Silva, G.B., Almeida, T.L.A.C., Borba, N.M., Cordeiro Manso, H.E.C.C., Manso Filho, H.C. (2017). Effects of glutamine and glutamate supplementation in dogs with hemorrhagic enteritis. Comp Clin Path, 26: 315-320. DOI:1007/s00580-016-2392-0
  3. Rose, L., Rose, J., Gosling, S., Holmes, M. (2017). Efficacy of a Probiotic-Prebiotic Supplement on Incidence of Diarrhea in a Dog Shelter: A Randomized, Double-Blind, Placebo-Controlled Trial.  Vet. Intern., 31: 377–382. https://doi.org/10.1111/jvim.14666
  4. Salazar, M., Chamorro, G.A., Salazar, S., Steele, C.E. (1996). Effect of Spirulina maxima consumption on reproductive and peri- and postnatal development in rats. Journal of Food and Chemical Toxicology, 34 (4): 353–359. https://doi.org/10.1016/0278-6915(96)00000-2
  5. Salminen, S., Collado, M.C., Endo, A., Hill, C., Lebeer, S., Quigley, E.M.M., Sanders, M.E., Shamir, R., Swann, J.R., Szajewska, H., Vinderola, G. (2021). The International Scientific Association of Probiotics and Prebiotics (ISAPP) consensus statement on the definition and scope of postbiotics. Nature Reviews Gastroenterology & Hepatology, 18: 649–667. DOI: 1038/s41575-021-00440-6
  6. Salminen, S. et al. (1998). Demonstration of safety of probiotics – a review. International Journal of Food Microbiology, 44: 93–106. https://doi.org/10.1016/S0168-1605(98)00128-7
  7. Satyaraj, E., Reynolds, A., Engler, R., Labuda, J., Sun, P. (2021). Supplementation of Diets With Spirulina Influences Immune and Gut Function in Dogs. Nutr., 8: 667072. https://doi.org/10.3389/fnut.2021.667072
  8. Satyaraj, E., Reynolds, A., Pelker, R., Labuda, J., Zhang, P., Sun, P. (2013). Supplementation of diets with bovine colostrum influences immune function in dogs. The British journal of nutrition, 110 (12): 2216–2221. https://doi.org/10.1017/S000711451300175X
  9. Schauf, S., Nakamura, N., Castrillo, C. (2019). Effect of Calsporin® (Bacillus subtilis C-3102) addition to the diet on faecal quality and nutrient digestibility in healthy adult dogs. Journal of Applied Animal Nutrition, 7 (3): 1–8. DOI:1017/jan.2019.2
  10. Scheller, S., Dworniczak, S., Pogorzelska, T., Rajca, M., Shani, J. (2000). Effect of quercetin, caffeic acid and caffeic acid phenylethyl ester, solubilized in non-ionic surfactants, on histamine release in vivo and in vitro. Arzneimittelforschung, 50 (1): 72-6. DOI: 10.1055/s-0031-1300166
  11. Simpson, J.W. (1998). Diet and Large Intestinal Disease in Dogs and Cats. The Journal of Nutrition, 128 (12): 2717–2722. https://doi.org/10.1093/jn/128.12.2717S
  12. Sparkes, A.H., Papasouliotis, K., Sunvold, G., Werrett, G., Gruffydd-Jones, E.A., Egan, K., Gruffydd-Jones, T.J., Reinhart, G. (1998). Effect of dietary supplementation with fructo-oligosaccharides on fecal flora of healthy cats. Am J Vet Res, 59 (4): 436–440. https://doi.org/10.2460/ajvr.1998.59.04.436
  13. Swanson, K., Fahey, G. (2004). The Role of Yeasts in Companion Animal Nutrition. Dept. of Animal Science, University of Illinois, International Symposium “Natural Technologies for Food Production”. Link: https://cabidigitallibrary.org
  14. Swanson, K., Grieshop, C.M., Flickinger, E.A., Bauer, L.L., Chow, JM, Wolf, B.W., Garleb, K.A., Fahey, G.C. Jr. (2002). Fructooligosaccharides and Lactobacillus acidophilus modify gut microbial populations, total tract nutrient digestibilities and fecal protein catabolite concentrations in healthy Adult dogs. Journal of Nutrition, 132: 3721–3731. https://doi.org/10.1093/jn/131.10.3042
  15. Szydłowska, A., Sionek, B. (2022). Probiotics and Postbiotics as the Functional Food Components Affecting the Immune Response. Microorganisms, 11 (1), 104. https://doi.org/10.3390/microorganisms11010104
  16. Tan, J., McKenzie, C., Potamitis, M., Thorburn, A.N., Mackay, C.R., Macia, L. (2014). The role of short-chain fatty acids in health and disease. Advances in Immunology, 121: 61–119. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-800100-4.00003-9
  17. Terada, A., Hara, H., Oishi, T., Matsui, S., Mitsuoka, T., Nakajyo, S., Fujimori, I., Hara, K. (1992). Effect of Dietary Lactosucrose on Faecal Flora and Faecal Metabolites of Dogs. Microbial Ecology in Health and Disease, 5 (2): 87–92. https://doi.org/10.3109/08910609209141294
  18. Tortola, L., Brunetto, M.A., Zaine, L., Vasconcellos, R.S., Oliveira, M.C.C., Nogueira, S.P., Carciofi, A.C. (2009). The use of psyllium to control constipation in dogs. Ciência Rural, Santa Maria, 39 (9): 2638-2641. https://www.researchgate.net/publication/262554208
  19. Wikiera, A., Irla, M., Mika, M. (2014). Prozdrowotne właściwości pektyn [Health-promoting properties of pectin]. Postepy higieny i medycyny doswiadczalnej (Online), 68, 590–596. DOI: 10.5604/17322693.1102342
  20. Witzel-Rollins, A., Murphy, M., Becvarova, I., Werre, S. R., Cadiergues, M. C., Meyer, H. (2019). Non-controlled, open-label clinical trial to assess the effectiveness of a dietetic food on pruritus and dermatologic scoring in atopic dogs. BMC veterinary research, 15 (1), 220. DOI: 1186/s12917-019-1929-2
  21. Zaitseva, O., Khudyakov, A., Sergushkina, M., Solomina, O., Polezhaeva, T. (2020). Pectins as a universal medicine. Fitoterapia, 146, 104676. https://doi.org/10.1016/j.fitote.2020.104676
  22. Zhang, W., Kwak, M., Park, H.B., Okimura, T., Oda, T., Chang-Whan Lee, P., Jin, J.O. (2019). Activation of Human Dendritic Cells by Ascophyllan Purified from Ascophyllum nodosum. Marine drugs., 17 (1): 66. https://doi.org/10.3390/md17010066
  23. Zommiti, M., Chevalier, S., Feuilloley, M.G.J., Connil, N. (2022). Editorial Special Issue “Enterococci for Probiotic Use: Safety and Risk”: Editorial. Microorganisms, 10: 604. https://doi.org/10.3390/microorganisms10030604